Ethidium Homodimer 1 (EthD-1)的使用方法(超详细)和作用机制
创始人
2025-07-05 19:17:14
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【使用方法】

(一)染色前准备

储存液配制

溶剂选择:EthD-1需溶于DMSO或甲醇,避光分装后于-20℃或-80℃长期保存,避免反复冻融8。

注意事项:DMSO需新鲜使用,避免吸湿影响溶解度;储存液建议分装,避免污染。

工作液配制

常规细胞染色:推荐浓度1-5 μM。

高背景干扰时:可降低浓度至0.1-1 μM。

稀释方法:使用无血清细胞培养基或PBS将储存液稀释至终浓度0.1-10 μM,具体浓度需根据细胞类型和实验需求调整。

例如&现用现配:工作液需当天使用,避免荧光淬灭。

(二)细胞染色步骤

适用场景:检测死细胞。

操作流程:

(1)细胞准备

悬浮细胞:离心收集,用PBS洗涤2次,去除培养基残留。

贴壁细胞:弃去培养基,用胰酶消化成单细胞悬液,离心洗涤后重悬于PBS。

注意:若需固定细胞,需在染色前固定,但固定后EthD-1可能无法保留,建议优先活细胞染色。

(2)染色孵育

加入EthD-1工作液,室温避光孵育15-60分钟。

优化时间:孵育时间过长可能导致非特异性结合,建议通过预实验确定合适时间。

(3)洗涤与重悬

离心去除染色液,用PBS洗涤2次,弃上清后用无血清培养基或PBS重悬细胞。

(4)检测

荧光显微镜:选择红色荧光通道,观察死细胞核的红色荧光。

流式细胞仪:设置红色荧光检测通道,分析死细胞比例。若需区分活细胞,可联合钙黄绿素AM进行双染。

酶标仪:用于高通量检测,需使用黑色酶标板,检测荧光强度。

(三)与其他染料联用

EthD-1常与活细胞染料联用,以同时评估细胞活力:

钙黄绿素AM(Calcein AM):活细胞酯酶将其水解为绿色荧光化合物,与EthD-1的红色荧光互补,可清晰区分活细胞(绿)与死细胞(红)。

碘化丙啶(PI):与EthD-1类似,但EthD-1对DNA亲和力更高,荧光更稳定,适用于复杂样本。

【技术参数】

英文名称:Ethidium Homodimer 1 (EthD-1)

中文名称:溴乙啡锭二聚体1

CAS NO:61926-22-5

分子式:C46H50Cl4N8

分子量:856.75

状态:红色固体

Ex/Em:528/617nm

溶解性:溶于DMSO(2mM)、甲醇

纯度:≥95%

储存条件:-20℃避光干燥

【描述与基本特性】

EthD-1是一种由两个乙锭分子通过乙二胺连接形成的同型二聚体化合物,EthD-1具有强正电荷特性,无法穿透完整细胞膜,但可与双链DNA(dsDNA)、单链DNA(ssDNA)、RNA及寡核苷酸结合,结合后荧光强度增强超过30倍。

作用机制

EthD-1的作用机制主要基于其与核酸的相互作用及电荷依赖的细胞选择性,具体可分为以下方面:

(一)核酸结合与荧光增强

嵌入式结合:EthD-1通过插入DNA双螺旋结构的碱基对之间,每个分子覆盖约4个碱基对,形成稳定的复合物。

这种结合方式导致其荧光强度显著增强,适用于高灵敏度的核酸检测。

多序列兼容性:与EB、PI等染料类似,EthD-1对核酸的结合无明显序列特异性,但对双链DNA的亲和力显著高于单链DNA或RNA。

(二)电荷依赖的细胞选择性

活细胞排斥:EthD-1携带强正电荷,而活细胞膜的磷脂双层具有负电荷屏障,因此无法穿透完整细胞膜。

死细胞渗透:当细胞膜因死亡或损伤失去完整性时,EthD-1可穿过无序的膜区域进入细胞核,与核酸结合后发出红色荧光,从而标记死细胞。

(三)细胞活力检测

EthD-1常与钙黄绿素AM联用,形成活/死双染体系:

活细胞标记:钙黄绿素AM在活细胞内酯酶作用下脱去乙酰基,转化为绿色荧光物质,标记活细胞。

死细胞标记:EthD-1仅标记膜通透性增加的死细胞,发出红色荧光。通过荧光显微镜或流式细胞仪可同时观察活/死细胞,定量分析细胞活力。

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注意:本试剂用于科研领域,其他用途概不适用!

编辑:以上内容由西安强化生物科技xxn整理!

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